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移动式大型植物光合表型测量系统
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移动式大型植物光合表型测量系统

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产品描述

 

移动式大型植物光合表型测量系统CropReporter采用一体化“可见光成像+叶绿素荧光成像+多光谱成像”技术对冠层尺寸60cm x 74cm范围内的植物进行深入的光合表型和形态结构表型测量分析。系统成像单元配置白光LED和405 nm、460 nm、520 nm、660 nm、720 nm的LED,成像单元除了能够测量数十个光合荧光参数外,还能够测量叶绿素成像、花青素成像、NDVI和可见光表型等(软件直接生成)。

 

系统配备4个轮子,样品室前后门可拉伸升降,可以方便的实现温室内基于“Sensor-to-Plant”模式的人工辅助高通量测量。

 

功能特性

  • 标准版成像面积74 x 60cm,可以移动,适合在温室内测量
  • 可定制成像面积达200 x 200cm 
  • 在百万像素水平上实现对荧光诱导曲线Fo、FI和FP相的测量
  • 全部采用LED光源来提供红外、远红外、白光和近红外
  • 仪器内置电脑用于成像测量、光照控制和数据存储
  • 实现多光谱测量,在测量光合作用之外,获取叶绿素指数、花青素指数、NDVI、红外成像和RGB成像。
  • 对荧光成像和多光谱成像进行逐个像素分析
  • 独一无二的大型植物测量技术,成像面积从74 x 60 cm到200 x 200 cm 
  • 定制化设计,可以顶部成像,也可以侧面成像,甚至顶部和侧面都成像
  • 可以集成到基于传送系统的高通量植物表型平台中,进行高通量的光合表型测量
  • 大景深成像技术

 

典型应用

 

 

 

 

 

 

 

主要技术参数

  • 相机传感器类型:CCD
  • 相机分辨率:1.3M像素
  • 图像格式:16位RAW格式、JPG格式
  • 光谱范围:350~950 nm
  • 光学滤光片:6种高质量光学干涉滤光片,包括荧光、红光、绿光、蓝光、花青素和近红外滤光片
  • 多光谱和彩色图像光源:白色LED和和405 nm、460 nm、520 nm、660 nm、720 nm的LED
  • LED控制:恒流电源控制LED强度,不采用脉冲调制控制
  • 成像和计算的参数:Fo成像、Fm成像、Ft成像、Ft=5min成像、Fm成像、Fv/Fm成像、Fq成像、ΦPSII成像、ΦRO成像、NPQ100成像、qN成像、qP成像、Rfd100成像、 NDVI成像、RNIR成像、RChl成像.、RAnth成像、RRed成像、RGreen成像、RBlue成像、叶绿素指数成像、花青素指数成像和可见光成像,能够自动计算投影叶面积、Fv/Fm平均值、低于Fv/Fm的面积百分比、ΦPSII平均值、低于ΦPSII的面积百分比、NPQ100平均值、高于NPQ100的面积百分比、Rfd100平均值、低于Rfd100的面积百分比、平均RGB比值、特殊RGB比值的面积百分比、平均叶绿素指数、低于叶绿素指数的面积百分比、平均花青素指数、低于花青素指数的面积百分比等(具体参数取决于版本) ,以及凸包、最小外接圆、最小外接矩形等相关表型参数。 

 

部分文献

  • Wang L, Liu F, Hao X, et al. (2021) Identification of the QTL-allele System Underlying Two High-Throughput Physiological Traits in the Chinese Soybean Germplasm Population. Frontiers in Genetics, https://doi.org/10.3389/fgene.2021.600444
  • Tan J, de Zutter N, de Saeger S, et al. (2021) Presence of the Weakly Pathogenic Fusarium poae in the Fusarium Head Blight Disease Complex Hampers Biocontrol and Chemical Control of the Virulent Fusarium graminearum Pathogen. Frontiers in Plant Science, https://doi.org/10.3389/fpls.2021.641890
  • Bhatnagar N, Pandey S. (2020) Heterotrimeric G-Protein Interactions Are Conserved Despite Regulatory Element Loss in Some Plants. Plant Physiology, DOI: https://doi.org/10.1104/pp.20.01309
  • Meng L, Mestdagh H, Ameye M et al. (2020) Phenotypic Variation of Botrytis cinerea Isolates Is Influenced by Spectral Light Quality. Frontiers in Plant Science, https://doi.org/10.3389/fpls.2020.01233
  • Venneman J, Vandermeersch L, Walgraeve C et al. (2020) Respiratory CO2 Combined With a Blend of Volatiles Emitted by Endophytic Serendipita Strains Strongly Stimulate Growth of Arabidopsis Implicating Auxin and Cytokinin Signaling. Frontiers in Plant Science, https://doi.org/10.3389/fpls.2020.544435
  • Tan J, Ameye M, Landschoot S et al. (2020) At the scene of the crime: New insights into the role of weakly pathogenic members of the fusarium head blight disease complex. Molecular Plant Pathology, DOI: 10.1111/mpp.12996
  • Velivelli S L S, Czymmek K J, Li H, Shaw J B, Buchko G W, Shah D M. (2020) Antifungal symbiotic peptide NCR044 exhibits unique structure and multifaceted mechanisms of action that confer plant protection. PNAS, DOI: 10.1073/pnas.2003526117
  • Li H, Velivelli S L S, Shah D M. (2019) Antifungal Potency and Modes of Action of a Novel Olive Tree Defensin Against Closely Related Ascomycete Fungal Pathogens. Molecular Plant-Microbe Interactions. 32(12): 1646-1664.
  • Mancarella S, Orsini F, van Oosten M J, SAnoubar R, Stanghellini C, Kondo S, Gianquinto G, Maggio A. (2016) Leaf sodium accumulation facilitates salt stress adaptation and preserves photosystem functionality in salt stressed Ocimum basilicum. Environmental and Experimental Botany, 130: 162-173.
  • Virlet N, Sabermanesh K, Sadeghi-Tehran P, Hawkesford M J. (2016) Field Scanalyzer: An automated robotic field phenotyping platform for detailed crop monitoring. Functional Plant Biology, 44(1): 143-153.
  • Gorbe Sanchez E, Heuvelink E, de Gelder A, Stanghellini C. (2015) New Non-invasive Tools for Early Plant Stress Detection. Procedia Environmental Sciences, 29: 249-250. 
关键词:
叶绿素荧光
叶绿素荧光成像
光合作用
光合表型
CropReporter
植物表型
作物表型
表型组学
PhenoVation
PhenoTrait
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