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Spotibot:基于深度学习与移动计算的玫瑰花瓣灰霉病病斑快速评分系统
发布时间:
2025-06-02
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玫瑰以其观赏价值著称,通过广泛育种和便捷的杂交手段,现已培育出丰富多样的花色与花型。在采后阶段,玫瑰极易受到灰霉病菌(Botrytis cinerea)引发的真菌性腐败。目前尚未发现对灰霉病的完全抗性,多项研究表明其抗性表现为数量性状特征。这意味着抗性涉及多个基因,且每个基因的贡献可能仅对抗性产生微弱影响。因此,开发能够精准区分微小效应差异的准确、快速、客观表型分析技术,对于育种筛选及发现新型灰霉病抗性或感病基因至关重要。Spotibot作为一款兼具网页端与移动端的表型分析软件,采用深度学习与移动计算技术自动检测玫瑰花瓣灰霉病病斑,具有极高的育种筛选应用价值。该算法可精准测量花瓣面积(mm²)、病斑面积(mm²)、病斑直径(mm)及病斑-花瓣面积比。基于深度学习的算法采用由粗到精的分割策略,通过两个实例分割模型实现:首个模型(F1分数=0.99)用于花瓣检测与分割,第二个模型(F1分数=0.96)则专门检测和分割花瓣上的灰霉病病斑。斯皮尔曼等级相关分析显示,人工主观评分与Spotibot生成的客观数据间具有高度近单调相关性。方差分析表明,相较于单纯使用主观数据,客观变量能揭示更多且更显著的玫瑰基因型间差异。本研究首创性地开发了快速、用户友好的玫瑰花瓣图像分析应用程序,为灰霉病抗性筛选提供了创新解决方案。
图1 图像采集装置示意图:(A) 三维结构示意图;(B) 拍摄箱内部实景图;(C) 手机端取景视图。
图2 玫瑰灰霉病病斑检测与分割算法流程。每个检测框包含多项输出数值(图示右下角说明),其中红色文字标注具体测量值。检测目标中橙色轮廓线表示灰霉病病斑实例分割结果,白色轮廓线表示花瓣实例分割结果。
图3 Spotibot系统界面截图:(A) 网页端应用;(B) 移动端应用;(C) 图B输出图像的局部放大,其中R表示病斑-花瓣面积比,p为置信度评分。
图4 不同花色玫瑰花瓣的灰霉病病斑发展情况:(A) 橙色花瓣;(B) 红色花瓣;(C) 粉色花瓣;(D) 白色花瓣。
图5 算法最优输出结果:(A) 白色花瓣培养皿检测效果,(B、C) 局部正确检测结果放大;(D) 红色花瓣培养皿检测效果,(E) 典型错误检测示例,(F) 正确检测结果。各检测框数值表示方式同图2所示,橙色轮廓线表示病斑实例分割,白色轮廓线表示花瓣实例分割。
图6 不同移动设备算法输出效果:(A、B、C) 三星Galaxy A52;(D、E、F) 小米Poco X3 Pro。各检测框数值表示方式同图2所示,橙色轮廓线表示病斑实例分割,白色轮廓线表示花瓣实例分割。
图7 主观评分与客观变量的非线性正相关关系。(A) 病斑直径AUDPC与主观AUDPC评分的相关性;(B) 病斑面积AUDPC与主观评分的相关性;(C) 病斑比例AUDPC与主观评分的相关性;(D) 接种后第6天(6DPI)病斑比例与主观评分(0-5级)的相关性。AUDPC值为3DPI与6DPI敏感度数据的综合指标,趋势线采用局部加权散点平滑法(LOESS)计算。
图8 基于主客观数据的玫瑰对照基因型灰霉病敏感性比较。(A) 主观评分,(B) 病斑直径,(C) 病斑面积,(D) 病斑比例的敏感性数据。纵轴为综合3DPI与6DPI数据的AUDPC值,各变量数据经1至-1标准化处理。箱型图上方的字母表示经Tukey HSD检验确定的基因型间显著性差异组别。
图9 基于主客观数据的灰霉菌株在选定基因型中的致病力比较。(A) 主观评分,(B) 病斑直径,(C) 病斑面积,(D) 病斑比例的敏感性数据。纵轴为综合3DPI与6DPI数据的AUDPC值,各变量数据经1至-1标准化处理。箱型图上方的字母表示经Tukey HSD检验确定的菌株间显著性差异组别。
Rustia D J A, Zerdoner M, Mensink M, et al. Spotibot: Rapid scoring of Botrytis lesions on rose petals using deep learning and mobile computing[J]. Plant Phenomics, 2025: 100029.
编辑
王永贤
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